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產品介紹：             

實驗操作

1. TRAzol的使用量情況如下。

樣品量

10 cm2的貼壁培養細胞

107的懸浮培養細胞

100 μl的白細胞

50～100 mg的普通組織樣品

50～100 mg的特殊組織樣品（肝、脾、骨及軟骨等）

15～30 mg的植物材料（多糖和多酚含量不高的）

2. 實驗樣品的研磨和勻漿。

A. 貼壁培養細胞

① 倒出培養液，用1×PBS清洗一次。

② 每10 cm2生長的培養細胞中加入1 ml的TRAzol，水平放置片刻，使裂解液均勻分布于細胞表面并裂解細胞，然后使用移液槍吹打細胞使其脫落(對于貼壁牢固的培養細胞可用細胞刮勺剝離細胞)。

③ 將內含細胞的裂解液轉移至離心管中，用移液槍反復吹吸直至裂解液中無明顯沉淀。

④ 室溫靜置5分鐘。

B. 懸浮培養細胞

① 將懸浮培養細胞連同培養液一起倒入離心管中，8,000 g 4℃離心2分鐘，棄上清。

② 向每107個細胞中加入l～2 ml的TRIzol。

③ 用移液槍反復吹吸直至裂解液中無明顯沉淀。

④ 室溫靜置5分鐘。

C. 動物組織、植物材料樣品

① 將超低溫凍結的RNA提取樣品稱量后迅速轉移至用液氮預冷的研缽中，用研杵研磨組織，其間不斷加入液氮，直至研磨成粉末狀(無明顯的可見顆粒，如果沒有研磨徹底會影響RNA的收率和質量)。

② 對于普通的RNA提取樣品，可以向研缽中加入適量的TRAzol，將研磨成粉末狀的樣品完全覆蓋，然后室溫靜置，直至樣品完全融化，再用研杵繼續研磨至裂解液呈透明狀。

   對于特殊樣品，如肝、脾、骨及軟骨等，可以將研磨成粉末狀的樣品加入到含有適量的TRAzol的勻漿管中，把勻漿管置于冰浴中進行勻漿，直至勻漿液呈無顆粒透明狀。

③ 將勻漿液轉移至離心管中，室溫靜置5分鐘。

④ 12,000 g 4℃離心5分鐘。

⑤ 小心吸取上清液，移入新的離心管中(切勿吸取沉淀)。

3. Total RNA的提取。

① 向上述步驟2的勻漿裂解液中加入氯仿(TRAzol的1/5體積量)，蓋緊離心管蓋，用力振蕩(氯仿沸點低、易揮發，振蕩時應小心離心管蓋突然彈開)。待充分乳化溶液呈乳白狀(無分相現象)后，再室溫靜置5分鐘。

② 12,000 g 4℃離心15分鐘。

③ 從離心機中小心取出離心管，此時勻漿液分為三層，即：無色的上清液、中間的白色蛋白層及帶有顏色的下層有機相。吸取上清液轉移至另一新的離心管中(切忌吸出白色中間層)。

④ 向上清中加入等體積的異丙醇，上下顛倒離心管充分混勻后，在15～30℃下靜置10分鐘。

⑤ 12,000 g 4℃離心10分鐘。一般在離心后，試管底部會出現沉淀。

4. RNA沉淀的清洗。

   小心棄去上清，緩慢地沿離心管壁加入75％的乙醇l ml(切勿觸及沉淀)，輕輕上下顛倒洗滌離心管管壁，12,000 g 4℃離心5分鐘后小心棄去乙醇(為了更好地控制RNA中的鹽離子含量，應盡量除凈乙醇)。

5. RNA的溶解。

   室溫干燥沉淀2～5分鐘(不可以離心或加熱干燥，否則RNA將會很難溶解，有關RNA溶解可以參考Troubleshooting中的相關說明)，加入適量的RNase-free水溶解沉淀，必要時可用移液槍輕輕吹打沉淀，待RNA沉淀完全溶解后于-80℃保存。

　注意事項：

  ● RNA樣本保存液如出現沉淀，37℃加熱振蕩混勻。

  ● 加入RNA樣本保存液后，樣本不能立即置于-20℃或-80℃，要先4℃置放過夜，待組織充分浸潤后再置于低溫保存。

  ● 樣品浸沒在RNA樣本保存液中，可在37℃保存1天，25℃保存1周，4℃保存1個月，-20℃長期保存；使用時請注意保存時限。

  ● 保存在RNA樣本保存液中的樣本可不經特殊處理，離心或直接使用和新鮮組織一樣的RNA提取方法提取RNA。

  ● RNA樣本保存液可以配合各種常見的RNA提取試劑盒使用，如東盛、invitrogen、omega等公司出品的RNA提取試劑盒，不影響試劑盒操作，不影響提取所得RNA質量及其后續實驗。